Авторы
    Резюме
    Файлы
    Ключевые слова
    Литература
    English

Лаврский А.Ю. 1 Лебединский И.А. 1 Четанов Н.А. 1 Кузаев А.Ф. 1 Артамонова О.А. 1
1 ГОУ ВПО «Пермский государственный гуманитарно-педагогический университет»

Фактор электромагнитного смога влияет на различные организмы, но в большей степени, без сомнения, на человека. Вероятно, ни один современный житель города не может представить своё существование без средств мобильной связи, таким образом, добровольно подвергая себя воздействию электромагнитных излучений. Большинство современных технологий беспроводной связи используют частоты в единицы гигагерц, работают в дециметровом диапазоне (300 МГц - 3 ГГц), а последние модели пользовательских точек доступа WI-fi в сантиметровом (5150-5350 МГц и 5650-6425 МГц).

По мнению ряда авторов, естественный электромагнитный фон является одним из факторов эволюционного процесса, но существенно не угнетает жизнедеятельность организмов [2]. Спектр искусственных источников СВЧ-излучений, в отличие от фона, имеет области со значительной интенсивностью, кроме того, направленные источники колебаний в случае человека нередко находятся в непосредственной близости от живых тканей. Эукариотическая клетка, растительная или животная, представляет собой сложнейшую систему из электрически-неоднородных элементов, областей концентрации зарядов, с динамическим равновесием ионов, характерным для ее нормальной жизнедеятельности, либо того или иного функционального состояния [1].

Именно клетка, содержащая ядро, представляется наиболее чувствительной к высокочастотным колебаниям из-за относительно больших размеров и значительно большей протяженности заряженных мембранных структур по сравнению с прокариотами. Эти факты говорят в пользу предположения, что взаимодействия клетки с периодическими колебаниями электрического и магнитного полей могут не ограничиваться исключительно температурным эффектом, т.е. поглощением энергии радиоволн с преобразованием в тепловую, что подтверждается работами ряда исследователей [4].

Воздействия ЭМИ различной амплитуды, частот и при разной экспозиции могут приводить к неоднозначным эффектам, служить как слабым стимулирующим, так и мутагенным и митотоксическим фактором [5; 7; 9].

Для глубокого понимания внутриклеточных процессов, вызываемых воздействием высокочастотных электромагнитных колебаний, необходимо выявить области спектра, имеющие наибольший отклик на биологических тест-системах. Данные подобных исследований представляют несомненный интерес с точки зрения биологии, кроме того, могут послужить в пользу сокращения влияния патогенных факторов индустриальной среды на здоровье человека.

Наиболее доступной биологической тест-системой для оценки стрессового влияния факторов является Allium-test. Эта тест-система имеет ряд преимуществ перед другими, в том числе растительными. Высокая скорость смены клеточных поколений в корневой меристеме лука Allium cepa обеспечивает достаточную чувствительность и сравнительно быструю реакцию на воздействующий фактор, которая проявляется в изменении скорости роста корней, а, следовательно, и деления клеток [8]. Методика имеет такие достоинства, как высокая скорость оценки, доступность материалов и хорошая корреляция с результатами исследований на клеточных культурах других представителей эукариот [6; 8; 10]. Данный тест позволяет выявлять митотоксическое либо стимулирующее действие фактора, сказывающееся на скорости деления клеток меристемы корня и митотическом индексе MI (%) – отношении числа клеток в различных фазах митоза к общему числу клеток [4; 7]. Кроме того, данная методика позволяет учитывать количество хромосомных аберраций, являющихся результатом мутагенного воздействия фактора, при помощи ана-телофазного метода. Хромосомные аберрации, возникающие при митотических делениях, как правило, довольно типичны и поддаются учету на давленых препаратах меристем, окрашенных красителями, специфичными к хроматину [8]. Частота возникновения аберраций ХА (%) выражается как отношение аберрантных митозов в анафазе и телофазе к общей сумме клеток, зафиксированных в этих фазах.

Цель данной работы – поиск зависимости частоты возникновения хромосомных аберраций в клетках корневой меристемы лука Allium cepa от частоты воздействующего СВЧ-излучения.

Методика

Для замеров исходного уровня мощности служил телефон E-Ten glofiish – X500, работающий в диапазонах GSM 850, GSM 900, GSM 1800, GSM 1900, с возможностью их ручного переключения. Уровень мощности излучения замерялся с помощью анализатора спектра на расстоянии 1 см от антенны телефона как в режиме разговора (прием + передача), так и в экранированной камере с минимальным качеством связи и принудительным переключением диапазонов. Показатель SAR (Specific Absorption Rate) для упомянутой модели телефона составляет 0,74 Вт/кг, что соответствует передатчику стандарта GSM среднего уровня мощности.

С помощью устройства-эмулятора имитировался источник излучений равной мощности, но различных частот.

В качестве источника исходного сигнала использовался генератор РГШ-3000, разработанный ООО «Радий-ТН», работающий в диапазоне 1-3000 МГц, имеющий возможности программного аттенюатора и модуляции сигнала. Сигнал с генератора поступал на усилитель на основе микросхемы GSM-передатчика SKY77325 и регулировался с помощью анализатора спектра до нужного уровня для корректировки неравномерности АЧХ выходного тракта эмулятора.

Для анализа воздействия электромагнитных колебаний на делящиеся клетки меристемы корня лука Allium cepa были предприняты меры по стабилизации других факторов среды, которые потенциально могли бы внести ошибку в результаты измерений.

Жидкая среда, на которой проращивались луковицы во всех опытах и контроле, термостатировалась при температуре 25 °C. Из-за неоднозначного влияния искусственных составов в качестве среды для проращивания для всей серии опытов применялась разово закупленная природная артезианская вода с известным и сбалансированным ионным составом.

Для равномерного облучения корней 10-12 луковиц лука сорта Штутгартен-ризен диаметром 15-18 мм проращивались в прямоугольной пластиковой кювете объемом 1270 мл, в узкой канавке из пищевого пластика, образованной стенкой кюветы и прямоугольной вставкой. В верхней части канавка расширялась, позволяя донцам луковиц свободно погружаться в раствор. Образованная полость толщиной 3 мм нижней и боковыми краями сообщалась с объемом кюветы, таким образом, корни располагались веерообразно, не контактируя ни с чем в толще раствора концевыми участками, что предотвращает влияния механических контактов на корневой прирост.

Луковицы снизу экранировались от области облучения сеткой из нержавеющей стали с ячейкой 1 мм, расположенной сразу под донцами, через которую корни проходили в кювету, по бокам и сверху - кожухом из фольгированного пенополиэтилена с вентиляционными отверстиями. Эта мера направлена на предотвращение облучения апикальной меристемы луковиц и возможного изменения уровня фитогормонов, влияющих на рост корней.

Излучатель электромагнитных колебаний, помещенный в гидроизоляционный чехол, располагался вдоль всей боковой стенки кюветы, и представлял собой антенну, выполненную на полоске стеклотекстолита с подключенным экранированным кабелем.

Такая конструкция позволяет равномерно облучать исследуемый материал, замеряя амплитуду воздействующих колебаний в разных участках зоны прорастания с помощью анализатора спектра с предварительно откалиброванной шкалой. Размещение образцов в непосредственной близости от излучателя позволяет облучать большее их количество с равномерной мощностью. Вся конструкция помещалась в экранированный заземленный металлический кожух, воздух в который подавался микрокомпрессором со скоростью 2,3 л/мин.

Исходя из того что клеточный цикл лука Allium cepa составляет, по данным разных авторов, 14-17,8 ч [1; 3], был определен 18-часовой период облучения.

После облучения срезались концевые участки корней по 3-5 мм и фиксировались с помощью фиксатора Кларка, после чего окрашивались 2%-ным ацетоорсеином, с последующей обработкой в 45%-ной уксусной кислоте и переносом в 70%-ный этанол для длительного хранения [1; 3].

Для анализа давленых препаратов меристем использовался микроскоп Ломо-Микмед-6 при увеличении х400 с CMOS-камерой EVS-5,17 mp. Проводился анализ 1000 клеток на 1 корень с последующим подсчетом митотического индекса и частоты хромосомных аберраций с использованием MS Excel.

В результате данного исследования были выявлены статистически достоверные отличия между такими показателями, как митотический индекс (MI) и количество хромосомных аберраций (ХА) для контрольной выборки луковиц, проращиваемых в экранированном кожухе без излучения, и этими показателями для выборок, в течение 18 часов подвергавшихся воздействию ЭМИ различных частот.

Результаты представлены в табл. 1.

Таблица 1.

Митотический индекс (MI) и частота хромосомных аберраций (XA) в меристеме корня лука Allium cepa при воздействии СВЧ-излучения различных частот (n = 10, p < 0,05)

частота, МГц

MI, %

XA, %

Частота хромосомных аберраций

d

t

контроль

2,54 ± 0,1302

6,03 ± 2,4375

-

-

660

2,23 ± 0,0658

19,95 ± 3,9447

13,92

3,00

800

1,93 ± 0,1495

31,31 ± 6,2478

25,28

3,77

930

2,01 ± 0,0956

36,95 ± 8,8532

30,92

3,37

1000

2,38 ± 0,1240

22,91 ± 4,7527

16,88

3,16

1110

2,33 ± 0,0709

37,47 ± 7,9152

31,44

3,80

1252

2,46 ± 0,1637

30,34 ± 4,9626

24,31

4,40

1853

2,37 ± 0,1128

27,03 ± 2,8366

21,00

5,62

Рис 1. Фазы митоза и хромосомные аберрации (1 – нормальная метафаза; 2 – потеря хромосомы в анафазе; 3 – мост в анафазе; 4 - потеря хромосом в анафазе)

Наиболее распространенными оказались патологии типа «мост» - результат объединения хромосом разных дочерних клеток, а также фрагменты, наблюдаемые, как правило, в анафазе, и потери целых хромосом при расхождении. Некоторые типы наблюдаемых хромосомных аберраций в анафазе митоза представлены на рис. 1.

На основании полученных данных можно сделать некоторые предварительные выводы.

    На всех использованных в эксперименте частотах ЭМИ установлено достоверное отличие по частоте возникновения хромосомных аберраций между контрольной и экспериментальной выборками, что говорит о мутагенном воздействии этого фактора.
    Контроль имеет собственную фоновую частоту возникновения аберраций, несмотря на тщательную изоляцию контрольной выборки от внешних воздействий и стабилизацию факторов среды. Это может быть обусловлено различными причинами как биологического характера, так и несовершенством экспериментальной установки.
    Наибольшее число аберраций зафиксировано при частотах 930 МГц и 1100 МГц. По всей видимости, наименьшим мутагенным эффектом при одинаковой мощности обладает излучение на частоте 660 мгц.
    Перечисленные пики мутагенной активности в диапазоне исследованных частот не соответствуют частотам, демонстрирующим наибольший митотоксический эффект, что может быть вызвано разными причинами, такими как воздействие колебаний на различные внутриклеточные структуры с разными последствиями.

Работа выполнена в рамках программы стратегического развития Пермского государственного гуманитарно-педагогического университета ПСР/НИР-15.

Рецензенты:

Золотухин Игорь Александрович, доктор технических наук, профессор кафедры ботаники, Пермский государственный гуманитарно-педагогический университет, г. Пермь.

Шураков Аркадий Иванович, доктор биологических наук, профессор кафедры зоологии, Пермский государственный гуманитарно-педагогический университет, г. Пермь.
Библиографическая ссылка
Лаврский А.Ю., Лебединский И.А., Четанов Н.А., Кузаев А.Ф., Артамонова О.А. ЗАВИСИМОСТЬ СКОРОСТИ МИТОТИЧЕСКОГО ДЕЛЕНИЯ КЛЕТОК И ЧАСТОТЫ ВОЗНИКНОВЕНИЯ ХРОМОСОМНЫХ АБЕРРАЦИЙ В МЕРИСТЕМЕ КОРНЕЙ ЛУКА АLLIUM CEPA ОТ ЧАСТОТЫ ВОЗДЕЙСТВУЮЩЕГО СВЧ-ИЗЛУЧЕНИЯ // Современные проблемы науки и образования. – 2013. – № 3.;
URL: http://www.science-education.ru/ru/article/view?id=9414 (дата обращения: 12.07.2016).   http://www.science-education.ru/ru/article/view?id=9414